نوع مقاله : عوامل عفونی - بیماریها

نویسندگان

1 گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی دانشگاه آزاد اسلامی واحد گرمسار، گرمسار، ایران

2 گروه میکروبیولوژی، دانشکده دامپزشکی دانشگاه سمنان، سمنان، ایران

3 گروه طب فیزیکی و توانبخشی، دانشگاه علوم پزشکی ایران، تهران، ایران

4 آزمایشگاه مرکزی رستگار، دانشکده دامپزشکی دانشگاه تهران، تهران، ایران

چکیده

زمینه مطالعه: پونه کوهی یکی از گیاهان دارویی است که  اسانس بدست آمده از این گیاه دارای خواص ضدباکتریایی می باشد. استافیلوکوکوس ارئوس عامل درصد بالایی از عفونت‌های زخم جراحی می‌باشد. هدف: مطالعه حاضر به منظور بررسی تغییرات فاکتورهای التیامی در استفاده از عصاره هیدروالکلی گیاه پونه کوهی در درمان زخم عفونی ناشی از استافیلوکوکوس اورئوس در مدل حیوانی موش صحرایی انجام گرفت. روش کار: در این تحقیق تعداد 20 سر موش صحرایی نر سفید تهیه و در ناحیه پشت و بین دو کتف، برشی تمام ضخامت به قطر Cm 5/1 ایجاد گردید. جهت عفونی نمودن زخم‌ها، پس از گذشت 24 ساعت از ایجاد زخم، 6-5 قطره از باکتری با رقت cfu/ml 104 در محل زخم تلقیح گردید. در گروه درمانی، سطح ضایعه کاملاً با عصاره پونه کوهی آغشته گردید و سپس تا 16 روز و به فاصله 24 ساعت، سطح ضایعه کاملاً با این عصاره آغشته می‌شد. اما در گروه کنترل، هیچ‌گونه تیماری برروی زخم‌ها در طول دوره آزمایش انجام نشد. سپس در روزهای 5، 10 و 16 از محل زخم‌ها نمونه برداری شده و فاکتورهای بیوشیمیایی و هسیتوپاتولوژی مورد بررسی قرار گرفت. نتایج: نتایج فاکتورهای بیوشیمیایی افزایش معنی داری را در میزان هیدروکسی پرولین و پروتئین تام در گروه درمان شده در مقایسه با گروه کنترل نشان داد. همچنین میزان هگزوزآمین در گروه درمانی بالاتر از کنترل بود. نتایج هیستوپاتولوژی نیز افزایش روند التیام در گروه درمانی را نسبت به گروه کنترل نشان داد. نتیجه‌گیری‌نهایی: در نتیجه می‌توان بیان داشت که، عصاره حاصل از این گیاه می‌تواند باعث تسریع در روند التیام در زخم عفونی شده با باکتری استافیلوکوکوس اورئوس در مدل حیوانی موش صحرایی گردد.

کلیدواژه‌ها


Barker, W., Rodeheaver, G.T., Edgerton, M.T., Edlich, R.F. (1982) Damage to tissue defenses by a topical anesthetic agent. Ann Emerg Med. 11: 307–310.
Chithra, P., Sajithlal, G.B., Chandrakasan, G. (1998) Influence of aloe vera on the healing of dermal wounds in diabetic rats. J Ethnopharmacol. 59: 195–201.
Chithra, P., Sajithlal, G.B., Chandrakasan, G. (1998) Influence of aloe vera on the glycosaminoglycans in the matrix of healing dermal wounds in rats. J Ethnopharmacol. 59: 179–186.
Cook, N. (1998) Methicillin-resistant Staphylococcus aureus versus the burn patient. Burns. 24: 91–98.
Derwich, E.L., Benziane, Z., Manar, A., Boukir, A.,  Taouil, R. (2010) Phytochemical analysis and in vitro antibacterial activity of the essential oil of Origanum vulgare from Morocco. Am Eurasian J Sci Res. 5: 120–129.
Diegelmann, R., Evans, M. (2004) Wound healing: An overview of acute, fibrotic and delayed healing. Front Biosci. 9: 283–289.
Dunphy, J.E., Udupa, K.N. (1956) Chemical and histochemical sequences in the normal healing of wounds. New Engl J Med. 253: 847–852.
Elson, L.A., Morgon, W.T. (1933) A colorimetric method for the determination of glucosamine and chondrosamine. Biochem J. 27: 1824–1828.
Gupta, A., Kumar, R.,  Pal, K.,  Banerjee, P.K., Sawhney, R.C. (2005) A preclinical study of the effects of seabuckthorn (Hippophae rhamnoides L.) leaf extract on cutaneous wound healing in albino rats.  Int J Low Extrem Wounds. 4: 88–92.
Kumar, B., Vijayakumar, M., Govindarajan, R. Pushpangadan, P. (2007) Ethnopharmacological approaches to wound healing-exploring medicinal plants of India. J Ethnopharmacol. 114: 103–113.
Lin, Z.Q., Kondo, T., Ishida, Y., Takayasu, T., Mukaida, N. (2003) Essential involvement of IL-6 in the skin wound-healing process as evidenced by delayed wound healing. J Leukocyte Biol. 73: 713–721.
Lowry, O.H., Roseborough, N.J., Farr, A.L., Randall, R.J. (1951) Protein measurement with the Folin phenol reagent. J Biol Chem. 193: 265–275.
Moslemi, H.R., Hoseinzadeh, H., Askari-Badouei, M., Kafshdouzan, K., Mazaheri Nezhad, R. (2012) Antimicrobial activity of Artemisia absinthium against surgical wounds infected by Staphylococcus aureus in a rat model. Indian J Microbiol. 52: 601–604.
Nayak, B.S. (2006) Cecropia peltata L (Cecropiaceae) has wound-healing potential: A preclinical study in a Sprague Dawley rat model. Int J Low Extrem Wounds. 5: 20–26.
Nayak, B.S., Pereira, L. (2006) Catharanthus roseus flower extract has wound-healing activity in Sprague Dawley rats. BMC Complement Altern Med. 6: 1-6.
Pather, N., Viljoen, A.M., Kramer, B. (2011) A biochemical comparison of the in vivo effects of Bulbine frutescens and Bulbine natalensis on cutaneous wound healing. J Ethnopharmacol. 133: 364–370.
Rasik, A.M., Raghubir, R., Gupta, A., Shukla, A., Dubey, M.P., Srivastava, S., Jain, H.K. Kulshreshtha, D.K. (1999) Healing potential of Calotropis procera on dermal wounds in Guinea pigs. J Ethnopharmacol. 68: 261–266.
Ricard-Blum, S., Ruggiero, F. (2005) The collagen superfamily: from the extracellular matrix to the cell membrane. Pathol Biol. 53: 430–442.
Saeed, S., Tariq, P. (2009) Antibacterial activity of oregano (Origanum vulgare Linn.) against gram positive bacteria. Pak J Pharm Sci. 22: 421–424.
Sivropoulou, A., Papanikolaou, E., Nikolaou, C., Kokkini, S., Lanaras, T., Arsenakis, M. (1998) Antimicrobial and cytotoxic activities of Origanum essential oils. J Agric Food Chem. 44: 1202–1205.
Stratford, A.F., Zoutman, D.E., Davidson, J.S. (2002) Effect of lidocaine and epinephrine on Staphylococcus aureus in a guinea pig model of surgical wound infection. Plast Reconstr Surg. 110: 1275–1279.
Sumitra, M., Manikandana, P., Suguna, L. (2005) Efficacy of Butea monosperma on dermal wound healing in rats. Int J Biochem Cell Biol. 37: 566–573.
Teoh, S.L., Latiff, A., Das, S. (2009) The effect of topical extract of Momordica charantia (bitter gourd) on wound healing in nondiabetic rats and in rats with diabetes induced by streptozotocin. Clin Exp Dermatol. 34: 815–822.
Woessner, J.F. (1961) The determination of hydroxyproline in tissue and protein samples containing small proportions of this amino acid. Arch Biochem Biophys. 93: 440–447.